En 1984, la Facultad
de Biología de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Perú,
clasificó y codificó la colección de germoplasma
de oca, olluco, mashwa y arracacha proveniente de los bancos de germoplasma
ex situ de las estaciones experimentales de Tahuaco (Puno) y Santa
Ana (Huancayo) del INIA; del Centro de Investigación de Cultivos
Andinos (CICA) de la Universidad San Antonio Abad (Cusco); Estación
Experimental Santa Catalina del Instituto Nacional de Investigación
Agraria (INIAP) del Ecuador; Universidad Nacional de Cajamarca y Asociación
de Agrobiotecnología de Cajamarca de acuerdo a la morfología
y color de los tubérculos (Arbizu, 1982); asimismo se efectuó
la determinación de los patrones electroforéticos.
Luego de desarrollar
las metodologías apropiadas para la introducción, micropropagación
y conservación in vitro se ha logrado conservar 224
clones de oca, 462 de olluco y 111 de mashwa, manteniendo cada muestra
por duplicado.
Siguiendo básicamente
la misma técnica (Estrada, 1992), pero con ligeras modificaciones,
en el Centro Internacional de la Papa se conservan in vitro tubérculos
(280) y raíces andinas (29), (Toledo et al. 1994). De igual
manera, Aguirre (1994), ha logrado el cultivo in vitro de ocas
y ollucos a partir de material de Bolivia.
El cultivo in
vitro de estas tres especies (oca, olluco y mashwa) se ha iniciado
con el cultivo de tejidos, sembrando yemas o meristemas en medio básico
de Murashige y Skoog (MS) suplementado con ácido giberélico
(GA3), y en el caso de oca es necesario adicionar 5g/l de carbón
activo (Estrada, 1992).
Las 797 entradas
(Cuadro 32) del Banco de Germoplasma in vitro del
Laboratorio de Recursos Genéticos y Biotecnología de la
UNMSM son conservadas bajo dos sistemas:
a) Crecimiento
continuo: segmentos nodales son sembrados en MS suplementado con sacarosa
al 2% para el caso de olluco y 3% en oca y mashwa. Las plántulas
necesitan ser transferidas a medio fresco cada dos a cuatro meses, dependiendo
de la especie; este sistema también es utilizado para micropropagación
y distribución.
b)Conservación
a mediano plazo: las plantas son sometidas a estrés osmótico
con manitol 4% para olluco y mashwa, y sorbitol 4% para oca. En olluco
y mashwa el sistema es utilizado rutinariamente, pero en oca aún
se sigue evaluando la respuesta de todos los genotipos de esta especie.
Mas aún, bajas temperaturas (6 a 9�C) han mostrado los mejores
resultados para el almacenamiento por largos períodos. Sin embargo,
el máximo período recomendable para almacenamiento in
vitro de olluco es dos años (Roel et al, 1993). Para
mantener por períodos mayores el germoplasma de estos cultivos
es necesario desarrollar métodos de criopreservación (Estrada,
1992). Resultados preliminares en olluco muestran un alto porcentaje (45%)
de supervivencia de los meristemas tratados.
Cuadro 32
Banco de germoplasma in vitro distribuido por lugar de origen
Banco de germoplasma in vitro distribuido por lugar de origen
| Origen |
Oca
|
Olluco
|
Mashwa
|
Total
|
| Cusco, Perú |
11
|
17
|
5
|
33
|
| Ecuador |
|
143
|
2
|
145
|
| Huancayo, Perú |
58
|
118
|
78
|
254
|
| Puno, Perú |
84
|
93
|
10
|
187
|
| Ayacucho, Perú |
62
|
69
|
10
|
141
|
| Cajamarca, Perú |
6
|
22
|
6
|
34
|
| Amazonas, Perú |
3
|
|
|
3
|
|
Total
|
224
|
462
|
111
|
797
|
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